ith their lamellae systems providin

ith their lamellae systems providing a
large surface area for CO2 diffusion, were better
equipped to photosynthesize in full sunlight than
mosses with unistratose leaves.
This paper supplements the data of Marschall &
Proctor (2004) and Proctor (2005) by describing
differences in leaf morphology of three Malaysian
Pogonatumspecies living in habitats receiving different light irradiances. Photochemical activities in
isolated chloroplasts and light saturation rates of
photosynthetic CO2assimilation in the three species
were investigated in addition to pigment content and
plastid structure, in an attempt to understand further
photosynthesis in bryophytes.
Materials and Methods
Plant material
The three species ofPogonatumwere collected from
Gunung Ulu Kali, Pahang,y30 miles north-east of
Kuala Lumpur. To minimize the effects of variable
factors other than light intensity, the plants were
collected within a small altitudinal range of 1440–
1480 m where temperature ranged 19.8–22.2uC. P.
cirratum subsp. macrophyllumwas collected from soil
and humus on dead logs in moist and deep shade in the
forest, where irradiance and relative humidity measurements averaged 28 W/m
2
and 94%, respectively. P.
subtortile grew on patches of soil, on rocks in shaded
areas by the roadside with average irradiance of 230 W/
m
2
whilstP. neesiiwas found growing on soils bare of
vegetation with irradiance measurements averaging
751 W/m
2
. Relative humidity in the latter two habitats
measuredy91%. The plants were collected together
with their underlying soil, placed in plastic bags, and
brought back to the laboratory for experimental work on
the same day.
Microscopy
Some leaves were fixed in 50% formalin acetic
alcohol, dehydrated through an ascending series of
alcohol, infiltrated with 49uC wax then 55uC wax, and
finally embedded in Paraplast wax. Serial sections
were cut at 6–7mthickness, mounted onto slides with
egg albumen, and dried at 40uC in an oven. The serial
sections were first stained in aqueous 10% safranin
and then counterstained in alcoholic fast green
solution. The slides were examined and photomicrographs were taken using a Wild Photoautomat
attached to a Leitz Diaplan microscope (Leitz
Messtechnik GmbH, Wetzlar, Germany). For chloroplast size and numbers per cell, mean and SD were
calculated from 50 cells, each 10 from five different
leaves. The ultrastructural parameters shown in
Table 1 were obtained from a minimum of 25
measurements from five different leaves embedded
in Spurr’s resin, sectioned, and stained as described in
Nasrulhaq-Boyce & Duckett (1991). Thin sections
were observed in a Philips transmission electron
microscope (Philips, Amsterdam, The Netherlands).
Chloroplast pigments and proteins
Chlorophyll was extracted in 80% acetone from
freshly collected leaves and its content was determined using the method of Arnon as outlined in
Nasrulhaq-Boyce & Mohamed (1987). Total carotene
content was estimated as described in Harborne
(1988). Protein was measured using the method of
Lowryet al.(1951). Chloroplasts were isolated from
the leaves as described in Griffiths (1975).
Photosynthetic assays
Assay of photochemical activities of Photosystem II
was determined as set out in Walker (1990) using a

Hasil (Bahasa Indonesia) 1:

engan sistem lamellae mereka menyediakanluas permukaan untuk difusi CO2, yang lebih baikdilengkapi untuk photosynthesize di sinar matahari penuh daripadaLumut dengan unistratose daun.Makalah ini suplemen data Marschall &Proctor (2004) dan Proctor (2005) dengan menggambarkanperbedaan dalam daun morfologi tiga MalaysiaPogonatumspecies yang hidup di habitat menerima irradiances cahaya yang berbeda. Fotokimia kegiatan dikloroplas terisolasi dan tingkat saturasi cahayafotosintetik CO2assimilation dalam tiga spesiesdiselidiki selain konten pigmen danstruktur plastid, dalam upaya untuk memahami lebih jauhfotosintesis pada bryophytes.Bahan dan metodeBahan tanamanOfPogonatumwere tiga spesies yang dikumpulkan dariGunung Ulu Kali, Pahang, y30 miles Utara-TimurKuala Lumpur. Untuk meminimalkan efek dari variabelfaktor-faktor selain intensitas cahaya, tanaman yangdikumpulkan dalam berbagai altitudinal kecil 1440-1480 m, dimana suhu berkisar 19,8-22.2uC. P.cirratum subsp. macrophyllumwas dikumpulkan dari tanahdan humus pada mati log dalam naungan lembab dan mendalam dalamhutan, di mana pengukuran irradiance dan kelembaban relatif rata-rata 28 W/m2dan 94%, masing-masing. P.subtortile tumbuh di perbaikan tanah, pada bebatuan di teduhdaerah di pinggir jalan dengan rata-rata irradiance 230 W /m2whilstP. neesiiwas ditemukan tumbuh di tanah yang telanjang darivegetasi dengan pengukuran irradiance rata-rata751 W/m2. Kelembaban relatif di kedua habitat duameasuredy91%. Tanaman yang dikumpulkan bersamadengan tanah yang mendasari mereka, ditempatkan dalam kantong plastik, dandibawa kembali ke laboratorium untuk percobaanhari yang sama.MikroskopBeberapa daun yang tetap dalam formalin 50% asetatdehidrasi alkohol, melalui serangkaian naikalkohol, menyusup dengan lilin 49uC kemudian 55uC lilin, danakhirnya tertanam di Paraplast lilin. Bagian serialdipotong di 6-7mthickness, dipasang pada slide dengantelur album, dan kering di 40uC dalam oven. SerialBagian pertama adalah patri dalam larutan 10% safranindan kemudian counterstained beralkohol cepat hijausolusi. Slide yang diteliti dan photomicrographs diambil menggunakan Photoautomat liarmelekat Leitz Diaplan mikroskop (LeitzMesstechnik GmbH, Wetzlar, Jerman). Kloroplas ukuran dan nomor per setiap sel, berarti dan SD yangdihitung dari sel-sel 50, masing-masing 10 dari lima yang berbedadaun. Parameter ultra ditampilkan dalamTabel 1 Diperoleh dari minimal 25pengukuran dari lima berbeda daun tertanamdalam Spurr's resin, dipotong, dan patri seperti yang dijelaskan dalamNasrulhaq-Boyce & Duckett (1991). Bagian tipisdiamati di Philips transmisi elektronmikroskop (Philips, Amsterdam, Belanda).Kloroplas pigmen dan proteinKlorofil diambil di aseton 80% dariDaun segar dikumpulkan dan isinya ditentukan menggunakan metode Arnon seperti yang diuraikan dalamNasrulhaq-Boyce & Mohamed (1987). Total karotenkonten ditaksir seperti yang dijelaskan dalam Harborne(1988). protein diukur menggunakan metodeLowryet al.(1951). Kloroplas diisolasi daridaun seperti yang dijelaskan dalam Griffiths (1975).Tes fotosintesisAssay kegiatan fotokimia Sarekat Islambertekad sebagaimana ditetapkan dalam Walker (1990) menggunakan

Hasil (Bahasa Indonesia) 2:

engan sistem lamellae mereka menyediakan
area permukaan besar untuk difusi CO2, yang lebih baik
dilengkapi untuk berfotosintesis di bawah sinar matahari penuh dari
lumut dengan daun unistratose.
Tulisan ini melengkapi data Marschall &
Proctor (2004) dan Proctor (2005) dengan menjelaskan
perbedaan morfologi daun tiga Malaysia
Pogonatumspecies hidup di habitat menerima irradiances cahaya yang berbeda. Kegiatan fotokimia di
kloroplas terisolasi dan tingkat saturasi cahaya
CO2assimilation fotosintesis di tiga spesies
diselidiki selain konten pigmen dan
struktur plastid, dalam upaya untuk memahami lebih lanjut
fotosintesis di bryophytes.
Bahan dan Metode
Tanaman bahan
Ketiga spesies ofPogonatumwere dikumpulkan dari
Gunung Ulu Kali, Pahang, Y30 mil utara-timur dari
Kuala Lumpur. Untuk meminimalkan efek variabel
faktor selain intensitas cahaya, tanaman yang
dikumpulkan dalam rentang ketinggian kecil 1440-
1480 m di mana suhu berkisar 19.8-22.2uC. P.
cirratum subsp. macrophyllumwas dikumpulkan dari tanah
dan humus di log mati di lembab dan mendalam teduh di
hutan, di mana radiasi dan kelembaban relatif pengukuran rata-rata 28 W / m
2
dan 94%, masing-masing. P.
subtortile tumbuh di patch tanah, di bebatuan di berbayang
daerah di pinggir jalan dengan rata-rata radiasi dari 230 W /
m
2
whilstP. neesiiwas ditemukan tumbuh di tanah telanjang
vegetasi dengan pengukuran radiasi rata-rata
751 W / m 2. Kelembaban relatif di dua terakhir habitat measuredy91%. Tanaman dikumpulkan bersama-sama dengan tanah yang mendasari mereka, ditempatkan dalam kantong plastik, dan dibawa kembali ke laboratorium untuk pekerjaan eksperimental pada hari yang sama. Microscopy Beberapa daun tetap di 50% formalin asetat alkohol, dehidrasi melalui serangkaian menaik alkohol, menyusup dengan 49uC lilin kemudian 55uC lilin, dan akhirnya tertanam dalam Paraplast lilin. Bagian Serial dipotong di 6-7mthickness, dipasang pada slide dengan albumen telur, dan dikeringkan pada 40uC dalam oven. Serial bagian pertama bernoda di air 10% safranin dan kemudian counterstained hijau cepat beralkohol solusi. Slide diperiksa dan photomicrographs diambil menggunakan Photoautomat liar melekat mikroskop Leitz Diaplan (Leitz Messtechnik GmbH, Wetzlar, Jerman). Untuk ukuran kloroplas dan nomor per sel, berarti dan SD yang dihitung dari 50 sel, masing-masing 10 dari lima berbeda daun. Parameter ultrastructural ditunjukkan pada Tabel 1 diperoleh dari minimal 25 pengukuran dari lima daun yang berbeda tertanam dalam resin Spurr ini, dipotong, dan bernoda seperti yang dijelaskan dalam Nasrulhaq-Boyce & Duckett (1991). Bagian tipis yang diamati dalam Philips transmisi elektron mikroskop (Philips, Amsterdam, Belanda). Pigmen kloroplas dan protein Klorofil diekstraksi di 80% aseton dari daun segar dikumpulkan dan isinya ditentukan dengan menggunakan metode Arnon yang dituangkan dalam Nasrulhaq-Boyce & Mohamed (1987). Jumlah karoten konten diperkirakan seperti yang dijelaskan di Harborne (1988). Protein diukur dengan menggunakan metode Lowryet al. (1951). Kloroplas diisolasi dari daun seperti yang dijelaskan dalam Griffiths (1975). Tes fotosintesis Assay kegiatan fotokimia fotosistem II ditentukan sebagaimana diatur dalam Walker (1990) menggunakan